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蛋白质的测定方法

发布时间:2005-09-13

测定食物中的蛋白质含量有二种方法,一是凯氏微量法,二是自动定氮分析法。 
一.凯氏微量法 
有手工滴定定氮和自动定氮仪定氮,实验者可根据经济条件设备而定。 
1.原理 
蛋白质是含氮的有机化合物。食品与硫酸和催化剂一同加热消化,使蛋白质分解,分解的氨与硫酸结合生成硫酸铵。然后碱化蒸馏使氨游离,用过量硼酸吸收后再以硫酸或盐酸标准溶液滴定,根据酸的消耗量乘以换算系数,即为蛋白质含量。 
2NH2(CH2)2COOH+13H2SO4 (NH4)2SO4+6CO2+12SO2+16H2O 
(NH4)2SO4+2NaOH 2NH3+2H2O+Na2SO4 
2.方法 
本法参照GB 5009.5 -85 
适用于各类食品及饲料中蛋白质的测定 
3.试剂 
所有试剂均用不含氨的蒸馏水配制。试剂均为分析纯。 
3.1硫酸铜 
3.2硫酸钾 
3.3浓硫酸 
3.4 2%硼酸溶液(或1%的硼酸) 
3.5 混合指示剂:1份0.1%甲基红乙醇溶液与5份0.1%溴甲酚绿乙醇溶液临用时混合。也可用2份0.1%甲基红乙醇溶与1份0.1%次甲基蓝乙醇溶液临用时混合。 
3.6饱和氢氧化钠:500g氢氧化钠加入500ml水中,搅拌溶解,冷却后放置数日,澄清后使用。 
3.7 0.01mol/L或0.05mol/L盐酸标准溶液:需标定后使用(配制及标定方法见附录) 
4.仪器 
消化炉 凯氏定氮蒸馏装置 万分之一电子天平 
凯氏定氮蒸馏装置:如图所示 
5. 操作步骤 
5.1样品处理:精密称取0.1~2.0g固体样品或2~5g半固体样品或吸取液体样品5~20ml,放入100ml或500ml凯氏烧瓶中,加入0.2g硫酸铜,0.3g硫酸钾及3~20ml浓硫酸,放置过夜后小心加热,待内容物全部炭化,泡沫完全停止后,加强火力,并保持瓶内液体微沸,至液体呈蓝绿色澄清透明后,取下放冷后用约2~10ml蒸馏水冲洗瓶壁,混匀后继续加热至液体呈蓝绿透明,取下放冷,小心加10~20ml水混匀 ,放冷后,移入100ml容量瓶中,并用少量水洗定氮瓶,洗液并入容量瓶中,再加水至刻度,混匀备用。取与处理样品相同量的硫酸铜、硫酸钾、硫酸按同一方法做试剂空白实验。 
5.2按图装好定氮装置,于水蒸气发生瓶内装水至约2/3处,加甲基红指示液数滴及数毫升硫酸,以保持水呈酸性,加入数粒玻璃 珠以防暴沸,加热煮沸水蒸气发生瓶内的水。 
5.3向接收瓶内加入10ml ,1~2%硼酸溶液及混合指示液1滴,并使冷凝管的下端插入液面下,吸取10ml样品消化稀释液由小玻璃杯流入反应室,并以10ml水洗涤小烧杯使之流入反应室内,塞紧小玻璃杯的棒状玻璃塞。将3~10ml饱和氢氧化钠溶液倒入小玻璃杯中,提起玻璃塞使其缓缓流入反应室,立即将玻璃塞盖紧,并加水于小玻璃杯中以防漏气。加紧螺旋夹,开始蒸馏。蒸气通入反应室使氨通过冷凝管而进入接收瓶内,蒸馏2min,移动接收瓶,使冷凝管下端离开液面,然后用少量中性水冲洗冷凝管下端外部,再蒸馏1min取下接收瓶,以0.01或0.05mol/L盐酸标准溶液滴定至灰色或蓝紫色为终点。 
同时吸取10ml试剂空白消化液按5.3操作。 
6. 计算 
X = (V-V0 )×C× 0.014× B/m ×100× F 
式中: 
X 一 样品中蛋白质含量,g/100g; 
V 一 样品消耗盐酸标准液的体积,ml; 
V0 - 空白消化液消耗盐酸标准液体积,ml; 
C 一 盐酸标准液摩尔浓度,mol/L; 
0. 014一 1mol/L 盐酸标准液1 ml相当氮克数. 
B 一 定容体积/取液量 
m 一 样品的质量,g; 
F 一 氮换算为蛋白质计算因子。蛋白质的氮素含量不同,故换算因子不同。详见下表。 
蛋白质计算因子 
食 物 计算因子 
蛋,鱼,肉及制品,禽类,玉米,高粱,豆类,水果和蔬菜类 6.25 
乳及乳制品 6.38 
大米 5.95 
小麦面 普通粉 5.70 
全麦,大麦,燕麦,裸麦,小米,小麦面全麦 5.83 
小麦 5.80 
黄豆 5.71 
花生 5.46 
芝麻,向日葵 ,核桃和榛子 5.30 
麸皮 6.31 
7. 举例 
设取样品0.1000g,消化后稀释至100 ml; 。取10 ml样品稀释液,标准盐酸为0.01 mol/L ,空白滴定为0.12 ml; ,样品滴定用去的标准盐酸为3.21 ml; ,测得样品中蛋白质百分率为: 
(3.21-0.12)×0.01×0.014×10/0.01× 100× 6.25 
=(3.21-0.12)×8.75=27.0% 
8. 附录: 
(1)标准HCl溶液(0.1 mol/L HCl)配制及标定: 
配制:量取9毫升HCl,加适量水稀释至1000毫升。 
标定:精确称取约0.15克左右在270~300℃干燥至恒重的基准无水碳酸钠,加50毫升水使之溶解,加10滴溴甲酚绿-甲基红混合指示液,(量取30ml 0.2%溴甲酚绿乙醇溶液,加入20ml 0.1%甲基红乙醇溶液,混匀)用配制的盐酸滴定至溶液由绿色变紫红色,煮沸2min,冷却至室温,继续滴定至溶液由绿色变为暗紫色。同时做试剂空白实验。 
(2)计算: 
C = m 
(v-v0)×0.0530 
C - HCl标准滴定溶液的实际浓度,mol/L 
m - 基准无水碳酸钠的质量,g; 
v - HCl标准滴定溶液用量,ml; 
vo - 试剂空白HCl标准滴定溶液用量,ml; 
0.0530-1.00 ml HCl标准滴定溶液〔C(HCl)=1mol/L〕相当基准无水碳钠g。 
0. 01mol/L HCl:精确吸取标定过的0.1mol/L HCl 10 ml,准确稀释至100 毫升。必要时重新标定浓度。 
9.注意事项: 
9.1干样用称量纸称重连纸一同消化,空白管同样放称量纸消化。 
9.2 含糖量高和油脂高的样品消化时容易溢出,加热要缓慢。 
9.3 稀释样品时消化液过热,加水反应猛烈使样品损失;消化液 过冷,加水后盐析不溶解。 
二、自动定氮分析法 
1.原理 
本方法为凯氏微量定氮法,将蛋白质的氮素转化成氨,与硫酸化合成硫酸铵,然后测定氨量。由此计算出氮素含量,再乘以相应的系数即为蛋白质含量。 化学反应式如下: 
2NH2(CH2)2COOH+13 H2SO4→(NH4)2 SO4+6CO2+12 SO2+16H2O 
(NH4)2 SO4+2NaOH→2 NH3+2H2O + Na2SO4 
2.方法来源 
GB/T 6432-94 本法适用于各种食物和饲料的测定 
3.仪器 
KJELTEC AUTO 1030 ANALYZER(瑞典特卡托公司) 40孔消化炉 
4.试剂 
本实验所用试剂皆为分析纯,所用水皆为蒸馏水 
(1)浓硫酸 98% H2SO4 
(2)凯氏片 (催化剂)K2SO4 + Se 
(3)40%氢氧化钠溶液(NaOH) W/V 
(4)无水硫酸钠 Na2SO4 
(5)1%硼酸(H3BO4)吸收液 称取100g硼酸溶于10L水中。加入100ml溴钾酚绿溶液,再加入70ml甲基红溶液,最后加入3ml 4%氢氧化钠溶液。 
(6)0.1mol/L盐酸(HCL)标准溶液,标定后使用。 
5.操作步骤 
5.1样品消化:称取一定量的样品于消化管中(半固体样品用称量纸称取),加一粒凯氏片于消化管中,然后加入5ml浓硫酸,放置过夜,同时做样品空白管。在消化过程中,先用低温消化(防止高温消化时样品溢出),低温消化1小时后,将温度升到最高档,至消化液无色透明。待消化液冷却后,加入少量水冲洗消化管内壁,振摇,以免内壁粘有样品以致消化不完全。然后于消化炉上再消化,直至液体无色透明。放置室温后,加水至25ml,待测。 
5.2样品定氮:开启1030自动分析仪电源,输入测定时的参数,打开STEAM按钮,产生蒸气5分钟,同时调节蒸气表,使蒸气表的指针指到NORMAL。最后将消化管装入,关闭安全门,开始自动定氮。当CYCLE OVER灯亮时,记录滴定结果,打开安全门,进行下一个样品测定。 
6.计算 
蛋白质(g/100g)= (V-V0)×0.01401×N×f/m×100 
V:样品消耗盐酸标准液的体积,ml; 
V0:试剂空白消耗盐酸标准液的体积, ml; 
N:盐酸标准溶液的摩尔浓度, mol; 
0.01401:1mol盐酸标准溶液1ml相当于氮克数 
f: 氮换算为蛋白质的系数(一般样品的系数为6.25); 
m:样品的质量,g; 
7.注意事项 
7.1 对含糖高的样品或油脂样品在消化过程中必须先低温消化,防止样品溢出,消化所需时间较长。 
7.2 样品的称样量不宜过多,否则试剂消耗多,消化时间长,适宜称样范围在0.05~2.00g之间。 
7.3 消化液过冷,在加水时,消化液有盐析出。将消化管放在消化炉上加热,使沉淀溶解。 
7.4 使用自动分析仪时,定氮前,应将管路中的吸收液排出去,因为管路中的吸收液长时间停留会变色。 
7.5 在产生蒸气的水中加入无水硫酸钠是为了提高水中的电解质。 
7.6 本仪器消耗盐酸标准溶液的用量最佳范围在0.5~7ml。

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